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        貼壁細胞傳代的方法和注意事項

        更新時間:2024-08-09點擊次數:1757
          細胞培養幾乎是所有細胞生物學實驗的基礎。其中,細胞傳代是將部分細胞分離出來,重新接種到新的培養皿中,使細胞重新獲得足夠的營養條件和生長空間的過程。對于貼壁生長的細胞,細胞密度長到80%-90%時,細胞狀態最好,此時可進行細胞傳代。下面讓我們一起來看看貼壁細胞傳代的方法和注意事項吧!
         
          一、貼壁細胞傳代(以T25瓶為例)
         
          1.顯微鏡下觀察細胞匯合度大于80%即可傳代;
         
          2.將移液管、移液槍、T25培養瓶、1ml槍頭、PBS溶液等放入超凈工作臺,紫外燈滅菌30min后再通風30min;
         
          3.培養基放置37℃水浴鍋預熱;
         
          4.將胰酶和培養基用75%酒精消毒后放入超凈工作臺;
         
          5.在培養箱內旋緊培養瓶瓶蓋,拿出細胞,用75%酒精消毒后放入超凈工作臺;
         
          6.吸棄上清液;
         
          7.用5mlPBS液潤洗細胞,吸棄PBS;
         
          8.培養瓶加入1ml胰酶,輕輕晃動使胰酶充分覆蓋細胞層,放入培養箱中孵育;
         
          9.在顯微鏡下觀察細胞解離狀況,細胞明顯變圓、細胞間隙增大,輕輕晃動可呈現流沙狀即可終止;
         
          10.加入4ml培養基終止消化,吹打細胞層表面數次,使其分散成單個細胞;
         
          11.收集細胞懸液到50ml離心管中,1000-1200r/min離心,3-5min去除胰酶;
         
          12.離心管用75%酒精消毒后放入超凈工作臺,吸棄上清液,用新鮮培養基重懸細胞;
         
          13.將細胞懸液按推薦傳代比例分裝到培養瓶,補充適量培養基,搖晃使細胞分布均勻,并做好標記;
         
          14.在顯微鏡下觀察細胞密度及狀態,把細胞放回培養箱,旋松瓶蓋以便進行氣體交換。
         
          二、注意事項:
         
          1.PBS潤洗細胞時,從與貼壁細胞層相對的容器一側輕輕加入PBS,避免沖刷到細胞層;
         
          2.不同細胞的胰酶所需消化時間不一樣,消化時間根據細胞貼壁特性而定,可每30s觀察一次。
         
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