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當前位置:首頁技術文章Polyplus jetPRIME® 轉染試劑標準操作步驟

Polyplus jetPRIME® 轉染試劑標準操作步驟

更新時間:2025-07-01點擊次數:1082

以下是 Polyplus jetPRIME® 轉染試劑 的標準操作步驟(適用于貼壁細胞),操作前請確認細胞狀態、核酸純度及實驗條件適配性。

一、試劑準備

試劑名稱

要求

jetPRIME®

使用前平衡至室溫,輕渦旋混勻(勿劇烈震蕩)

核酸(DNA/siRNA

高純度(OD<sub>260/280</sub>≈1.8-2.0),無菌無內毒素,溶于無菌水或TE緩沖液

jetPRIME® Buffer

提供無菌緩沖液(若試劑盒內含)

細胞培養基

含血清 & 抗生素(轉染全程無需更換無血清培養基)

 

二、 Polyplus jetPRIME® 轉染試劑操作流程(24孔板為例)

 Day 0: 細胞鋪板

1. 細胞計數:消化對數生長期細胞,調整密度。  

2. 鋪板:  

   - 每孔加入 0.5~1×10? cells(貼壁細胞)  

   - 500μL wan-quan培養基(含10%血清+抗生素)培養。  

   - 關鍵:轉染時細胞密度需達 70~90% 匯合度(過度生長降低效率)。

 Day 1: 轉染(耗時<15分鐘)

> ?? 所有步驟在無菌環境(超凈臺)操作,試劑室溫平衡。

步驟

操作

1. 稀釋核酸

 1μg DNA(或 1.5~5nM siRNA)加入 200μL jetPRIME Buffer 中,輕混勻(如無Buffer可用無菌Opti-MEM替代)。

2. 加轉染試劑

向稀釋核酸中加入 2μL jetPRIME®DNA:jetPRIME = 1μg:2μL)。

3. 混合孵育

立即渦旋10 → 室溫靜置10分鐘(溶液變渾濁屬正常現象)。

4. 加入細胞

將混合液 逐滴加入細胞孔,輕搖培養板混勻。

5. 繼續培養

放回37℃ CO<sub>2</sub>培養箱,無需更換培養基

 

 三、關鍵優化參數

變量

推薦條件

調整建議

細胞密度

70~90% 匯合度

過密降低效率;過低細胞毒性

DNA:jetPRIME比例

1μg DNA : 2μL 試劑(24孔板標準)

按比例放大/縮小(如6孔板用4μg DNA+8μL試劑)

siRNA用量

終濃度 10~50nM(參考細胞類型)

敏感細胞從低濃度(10nM)起始測試

孵育時間

轉染后 24~72小時 檢測表達(峰值通常48h

熒光蛋白觀察24h,功能實驗需48~72h

 

 

 四、懸浮細胞轉染步驟

若轉染懸浮細胞(如JurkatTHP-1):  

1. 離心收集細胞 重懸于 新鮮培養基(密度 0.5~1×10? cells/mL)。  

2. 1mL細胞懸液 + 混合液(1μg DNA + 2μL jetPRIME) 加入EP管。  

3. 輕柔混勻 → 37℃靜置 15~30分鐘 轉移至培養板繼續培養。

 五、 Polyplus jetPRIME® 轉染試劑使用注意事項

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1. 細胞狀態:僅用健康、低傳代細胞(傳代<30)。  

2. 試劑保存:jetPRIME® 4℃避光保存(非-20℃),保質期內穩定。  

3. 避免污染:核酸和Buffer嚴格無菌操作。  

4. 毒性處理:若細胞死亡率高:  

   - ↓ 降低jetPRIME用量(如1μg DNA1.5μL試劑)  

   - ↓ 縮短轉染后培養時間(24h后換液)。  

5. 對照設置:必設 空載體對照組 + 未轉染組。

 六、Polyplus jetPRIME® 轉染試劑替代方案(特殊情況)

場景

替代方案

高難度細胞(原代、神經元)

改用 jetOPTIMUS®

體內轉染

搭配 in vivo-jetPEI®

大片段DNA>15kb

測試 jetPEI®

 

 

 

 

問題排查:若效率低 檢查核酸純度、細胞密度、試劑比例;或聯系 polyplus代理——天津益元利康生物科技有限公司獲取技術支持。

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