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免疫組化(IHC)核心技術要點

更新時間:2025-10-09點擊次數:251

一個成功的IHC實驗,以下七個環節至關重要,如同一個精密的鏈條,缺一不可。

免疫組化(IHC)核心技術要點樣本制備 - 基石

組織固定:

要點: 及時、充分、適度。離體組織應盡快(通常30分鐘內)放入足量(10-20倍體積)的10%中性福爾馬林緩沖液中。

目的: 保存抗原性,防止降解和彌散。固定不足會導致抗原丟失;固定過度會遮蔽抗原表位,導致后續抗原修復困難。

石蠟包埋與切片:

要點: 組織脫水、透明、浸蠟過程要ce底但不過度。切片厚度通常為3-5μm,要求平整、無褶皺、無裂痕。

目的: 獲得高質量的組織切片,為后續染色提供基礎。

免疫組化(IHC)核心技術要點二:抗原修復 - 關鍵步驟

為什么需要: 福爾馬林固定會使蛋白質交聯,遮蔽抗原表位??乖迯偷哪康氖谴蚱七@些交聯,使抗原重新暴露。

主要方法:

熱誘導表位修復(HIER): zui常用。使用檸檬酸鹽(pH 6.0)或EDTA/EGTApH 8.0-9.0)緩沖液,在微波爐、高壓鍋或水浴鍋中加熱。pH值的選擇對某些抗體至關重要。

酶消化修復: 使用胰蛋白酶、胃蛋白酶等。適用于部分固定過度或特定抗原。

要點: 根據目標抗原和一抗說明書,優化修復方法和pH值。修復后需自然冷卻,避免驟冷。

免疫組化(IHC)核心技術要點三: 內源性過氧化物酶阻斷

要點: 在加入一抗前,用3% H?O?溶液處理切片,孵育10-15分鐘。

目的: 阻斷組織內源性的過氧化物酶(尤其在紅細胞、粒細胞中),防止在后續DAB顯色時產生非特異性背景著色。

免疫組化(IHC)核心技術要點四:封閉

要點: 使用與二抗來源同種的正常血清(如,二抗是山羊抗兔,則用正常山羊血清)或BSA(牛血清白蛋白),室溫封閉20-30分鐘。

目的: 封閉組織切片上非特異性的蛋白質結合位點,減少一抗、二抗的非特異性吸附,降低背景。

免疫組化(IHC)核心技術要點五:抗體孵育- 核心反應

一抗孵育:

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要點: 抗體濃度、孵育時間和溫度是三大關鍵變量。必須參照說明書并進行預實驗優化。孵育通常在4°C過夜(特異性好)或室溫1-2小時(快速)。

目的: 特異性識別并結合目標抗原。

二抗孵育:

要點: 二抗需與一抗的種屬和亞型匹配。通常室溫孵育30-60分鐘。

目的: 攜帶標記物(如酶HRP或熒光基團)與一抗結合,起放大信號的作用。

免疫組化(IHC)核心技術要點六:顯色

要點: zui常用的是DAB(二氨基聯苯胺) 顯色。DABHRP催化下產生棕褐色不溶性沉淀。

關鍵: 鏡下控制顯色時間! 通常在顯微鏡下觀察,待特異性信號清晰而背景未著色時立即終止反應(一般幾十秒到幾分鐘)。時間過短則信號弱,過長則背景深。

其他: AEC(紅色)等,但產物溶于有機溶劑,需水性封片劑封片。

免疫組化(IHC)核心技術要點七:復染、脫水、封片

復染: 常用蘇木精(Hematoxylin 對細胞核進行藍色復染,提供組織形態學對照。

脫水透明: 經酒精梯度脫水,二甲苯透明,使組織透亮。

封片: 使用中性樹膠封片,長期保存。

 

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